Avaliação da atividade antimicrobiana de formulações farmacêuticas contendo extrato etanólico da casca da banana (Musa paradisiaca
DOI:
https://doi.org/10.70151/5e9ay615Keywords:
atividade antibacteriana, atividade antifúngica, medicamento fitoterápico, planta medicinalAbstract
O presente trabalho teve como objetivo obter extratos etanólicos de cascas de Musa paradisiaca (provenientes de colheita e descarte) e incorporá-los em formulações galênicas para avaliar sua atividade antimicrobiana. Foi realizado um estudo fitoquímico por cromatografia em camada delgada (CCD) dos extratos preparados por maceração ou turbólise. Os extratos e formulações obtidos foram avaliados quanto a sua ação antimicrobiana frente as estirpes de Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli; Candida albicans, Candida tropicalis, Candida krusei, Trichophyton mentagrophytes e Microsporum gypseum pela técnica de microdiluição para determinação da Concentração Inibitória Mínima (CIM). O estudo fitoquímico evidenciou a presença de flavonóides, derivados cinâmicos, terpenos e esteroides em todos os extratos analisados. Quanto a atividade antimicrobiana, todos os extratos apresentaram uma moderada atividade antibacteriana frente as cepas avaliadas (CIM entre 512 e 1024 µg/ml) e uma atividade antifúngica com CIM variando de 256 a 1024 µg/ml. Porém, das 16 formulações obtidas neste trabalho, apenas 3 apresentaram atividade antifúngica e nenhuma formulação apresentou atividade antibacteriana. Esses resultados demonstram o potencial antimicrobiano dos extratos de M. paradisiaca e podem fornecer suporte para estudos futuros visando a obtenção de uma formulação farmacêutica a base de extrato de M. paradisiaca.
Downloads
References
Accioly MP (2019) Atividade leishmanicida in vitro de frações de Spondias mombin e Musa paradisíaca sobre Leishmania chagasi. 2009. Dissertação (Mestrado em Ciências Veterinárias), Faculdade de Veterinária, Universidade Estadual do Ceará, Fortaleza-CE, Brasil.
Arrais LG, Lyra HFS, Batista DCA, Coutinho FN, Saraiva AM, Pereira RCA, Pisciottano MNC, Xavier HS, Melo SJ (2014) Atividade antimicrobiana dos extratos metanólicos da raiz, caule e folhas de Croton pulegioides Baill. (Zabelê). Rev Bras Plantas Med 16(2):316–322. https://doi.org/10.1590/1983-084X/12_033.
Bittencourt FO, Padilha FF, Siqueira AL, Dantas CG, Mendonça LS, Araújo YLFM, Araújo ED, Cardoso JC (2014) Avaliação da atividade antifúngica de formulações semi-sólidas contendo extrato hidroalcoólico de própolis vermelha. Scientia Plena 10(10):1-11. https://scientiaplena.org.br/sp/article/view/1914.
Casteli VC, Mendonça CC, Campos MAL, Ferrari M, Machado SRP (2008) Desenvolvimento e estudos de estabilidade preliminares de emulsões O/A contendo Cetoconazol 2,0%. Acta Sci 30(2):121-128. https://doi.org/2:121-128. 10.4025/actascihealthsci.v30i2.812.
Cushnie TP, Lamb AJ (2005) Antimicrobial activity of flavonoids. Int J Antimicrob Agents 26(5):343–356. https://doi.org/10.1016/J.IJANTIMICAG.2005.09.002.
Cushnie TP, Lamb AJ (2011) Recent advances in understanding the antibacterial properties of flavonoids. Int J Antimicrob Agents 38(2):99–107. https://doi.org/10.1016/J.IJANTIMICAG.2011.02.014.
Eleazu CO, Okafor PN, Ahamefuna I (2010) Total antioxidant capacity, nutritional composition and inhibitory activity of unripe plantain (Musa paradisiacae) on oxidative stress in alloxan induced diabetic rabbits. Pakistan J Nutr 9(11):1052–1057. https://doi.org/10.3923/PJN.2010.1052.1057.
Emaga HT, Andrianaivo RH, Wathelet B, Tchango JT, Paquot M (2007) Effects of the stage of maturation and varieties on the chemical composition of banana and plantain peels. Food Chem. 103(2):590–600. https://doi.org/10.1016/J.FOODCHEM.2006.09.006.
BRASIL (2012) Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Comissão da Farmacopéia. Formulário Nacional da Farmacopeia Brasileira, 2ª edição, 2012. Disponível em: http://www.anvisa.gov.br/hotsite/farmacopeiabrasileira/arquivos/2012/FNFB%202_Revisao_2_COFAR_setembro_2012_atual.pdf. Acesso em: 05 jun. 2017.
Houghton PJ, Howes MJ, Lee CC, Steventon G (2007) Uses and abuses of in vitro tests in ethnopharmacology: visualizing an elephant. J Ethnopharmacol 110(3):391–400. https://doi.org/10.1016/J.JEP.2007.01.032.
Ighodaro OM (2012) Evaluation study on Nigerian species of Musa paradisiaca Peels: Phytochemical screening, Proximate analysis, Mineral Composition and Antimicrobial Activities. Researcher 4(8):17-20. http://www.sciencepub.net/researcher.
Imam MZ, Akter S (2011) Musa paradisiaca L. and Musa sapientum L. : A Phytochemical and Pharmacological Review. J Appl Pharm Sci 05:14–20.
Kanazawa K, Sakakibara H (2000) High Content of Dopamine, a Strong Antioxidant, in Cavendish Banana. J Agric Food Chem 48(3):844–848. https://doi.org/10.1021/JF9909860.
Kappel VD, Cazarolli LH, Pereira DF, Postal BG, Madoglio FA, Buss ZS, Reginatto FH, Silva FRMB (2013) Beneficial effects of banana leaves (Musa x paradisiaca) on glucose homeostasis: multiple sites of action. Rev Bras Farmacogn 23(4):706–715. https://doi.org/10.1590/S0102-695X2013005000062.
Karadi R, Shah A, Parekh P, Azmi P (2011) Antimicrobial Activities of Musa paradisiaca and Cocos nucifera. Int J Res Pharm Biomed Sci 2:264-267.
Knapp FF, Nicholas HJ (1969) The sterols and triterpenes of banana peel. Phytochemistry 8(1):207–214. https://doi.org/10.1016/S0031-9422(00)85814-8.
Oliveira AB (2007) Microencapsulamento de estigmasterol proveniente de Musa Paradisiaca L., Musaceae. 2007. 112f. Dissertação (Mestrado), Universidade Federal do Paraná, Curitiba-PR, Brasil.
Oliveira L, Freire CS, Silvestre AJ, Cordeiro N (2008) Lipophilic extracts from banana fruit residues: a source of valuable phytosterols. J Agric Food Chem 56(20):9520–9524. https://doi.org/10.1021/JF801709T.
Oliveira VB, Zuchetto M, Oliveira CF, Paula CS, Duarte AFS, Miguel MD, Miguel OG (2016) Efeito de diferentes técnicas extrativas no rendimento, atividade antioxidante, doseamentos totais e no perfil por clae-dad de dicksonia sellowiana (presl.). Hook, dicksoniaceae. Rev Bras Plantas Med 18(1):230–239. https://doi.org/10.1590/1983-084X/15_106.
Ostrosky EA, Mizumoto MK, Lima MEL, Kaneko TM, Nishikawa SO, Freitas BR (2008) Métodos para avaliação da atividade antimicrobiana e determinação da Concentração Mínima Inibitória (CMI) de plantas medicinais. Rev Bras Farmacogn 18(2):301–307. https://doi.org/10.1590/S0102-695X2008000200026.
Pannangpetch P, Vuttivirojana A, Kularbkaew C, Tesana S, Kongyingyoes B, Kukongviriyapan V (2001) The antiulcerative effect of Thai Musa species in rats. Phytother Res 15(5):407–410. https://doi.org/10.1002/PTR.766.
Pothavorn P, Kitdamrongsont K, Swangpol S, Wongniam S, Atawongsa K, Savasti J, Somana J (2010) Sap phytochemical compositions of some bananas in Thailand. J Agric Food Chem 58(15):8782–8787. https://doi.org/10.1021/JF101220K.
Sartoratto A, Machado ALM, Delarmelina C, Figueira GM, Duarte MCT, Rehder VLG (2004) Composition and antimicrobial activity of essential oils from aromatic plants used in Brazil. Brazilian J Microbiol 35(4):275–280. https://doi.org/10.1590/S1517-83822004000300001.
Silva AA, Morais SM, Falcão MJ, Vieira IG, Ribeiro LM, Viana SM, Teixeira MJ, Barreto FS, Carvalho CA, Cardoso RP, Andrade-Junior HF (2014) Activity of cycloartane-type triterpenes and sterols isolated from Musa paradisiaca fruit peel against Leishmania infantum chagasi. Phytomedicine 21(11):1419–1423. https://doi.org/10.1016/J.PHYMED.2014.05.005.
Souza AJF (2009) Avaliação dos efeitos antimicrobianos de rutina e quercetina in vitro. 2009. 62f. Dissertação (Mestrado), Instituto de Biologia, Universidade Estadual de Campinas, Campinas-SP, Brasil.
Zhang P, Whistler RL, Bemiller JN, Hamaker BR (2005) Banana starch: production, physicochemical properties, and digestibility—a review. Carbohydr. Polym. 59(4):443–458. https://doi.org/10.1016/J.CARBPOL.2004.10.014.
Downloads
Published
Issue
Section
License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
